Matrix & Gribnick
Привет, Матрикс. Я тут изучал распространение тлей на участке старовозрастного леса – кажется, есть закономерность, которую стоило бы проанализировать, чтобы понять, какие экологические факторы тут действуют.
Конечно. Какие данные у тебя есть – координаты, подсчет видов, экологические параметры? И с каким софтом ты работаешь, или, может, тебе что-нибудь посоветовать?
У меня есть координаты каждого участка, перечень всех видов, замеченных там, и несколько заметок об окружающей среде – pH почвы, процентное покрытие пологом, и приблизительный индекс освещенности. Еще есть небольшая запись измерений влажности, сделанных утром и вечером. Обычно я использую R для основной работы, с пакетами типа sp, sf и ggplot2 для картографии, плюс tidyverse для очистки данных. Если тебе удобнее в Python, я могу заменить это на geopandas и matplotlib, но в R у меня все идет как по маслу. Скажи, что тебе по душе, и мы настроим анализ.
Звучит неплохо. Придерживайся R; сейчас набросаю короткую схему: 1) импортируй данные GPS в объект sf, 2) объедини подсчеты видов по ID участка, 3) рассчитай видовое богатство и индекс Шеннона для каждого участка, 4) запусти мультивариативную модель – например, анализ избыточности (RDA) или GLMM с участком в качестве рандомного эффекта, чтобы посмотреть, как pH, полог, освещенность и влажность влияют на состав сообществ, 5) визуализируй результаты с помощью ggplot2, используя тепловую карту или ординационную диаграмму для матрицы видов. Дай знать, если понадобится помощь со скриптом для RDA или настройкой GLMM.
Вот тебе набросок, который ты можешь перенести в свой скрипт.
```r
# Пакеты
library(sf)
library(tidyverse)
library(vegan)
library(lme4)
# 1. Импорт GPS и данных о видах
gps <- st_read("plots.gpkg") # shapefile или GeoPackage
spp <- read_csv("species_counts.csv") # столбцы: plot_id, species, count
# 2. Объединение данных
plot_data <- gps %>%
left_join(spp, by = "plot_id") %>%
group_by(plot_id) %>%
summarise(across(starts_with("species_"), sum, na.rm = TRUE),
pH = first(pH),
canopy = first(canopy),
light = first(light),
moisture = first(moisture))
# 3. Метрики разнообразия
diversity <- plot_data %>%
mutate(richness = rowSums(select(., starts_with("species_")), na.rm = TRUE),
shannon = diversity(select(., starts_with("species_")), index = "shannon"))
# 4a. Анализ избыточности (RDA)
species_matrix <- select(plot_data, starts_with("species_"))
env_vars <- select(plot_data, pH, canopy, light, moisture)
rda_res <- rda(species_matrix ~ pH + canopy + light + moisture, data = env_vars)
summary(rda_res)
# 4b. GLMM (если предпочитаешь смешанную модель)
glmm <- glmer(count ~ pH + canopy + light + moisture + (1|plot_id),
data = spp, family = poisson())
# 5. Построение графиков
ggplot(rda_res, aes(colour = pH, size = canopy)) +
geom_point() +
labs(title = "RDA сообщества грибных образований",
colour = "pH",
size = "Покрытие полога")
```
Просто замени имена файлов и префиксы столбцов на свои. Не стесняйся менять семейство в GLMM, если обнаружится передисперсия. Дай знать, как выглядят графики!
Вроде всё хорошо. Просто перепроверь, начинаются ли колонки видов с "species_", или подправь вызовы select. Если увидишь избыточное дисперсию в Poisson GLMM, переходи на отрицательное биномиальное распределение с glmmTMB. Для RDA, возможно, стоит сначала стандартизировать переменные среды — центрирование и масштабирование сделают оси понятнее. Потом, когда запустишь, биоплот видов и площадок покажет, какие переменные влияют на закономерность. Дай знать, если возникнут какие-то проблемы.
Спасибо за предупреждение. Прогоню масштабирование по экологической матрице, вытащу биплот и посмотрю, как виды соотносятся с pH и пологом кроны. Если GLMM всё ещё будет глючить, перейду на glmmTMB. Сообщу, как только графики будут выглядеть нормально, или если что-то странное вылезет.